VISUALIZACIÓN DE UNA CÁMARA DE RECUENTO (PRACTICA XII)

20 /11/2014
MATERIAL :

• Microscopio.
• Una cámara de recuento de Neubauer mejorado.

PROCEDIMIENTO :

1º Observar con el microscopio el reticulo de la cámara de recuento:

• Primero,con el objetivo de pequeño aumento (4x).
• Después ,con el objetivo de mediano aumento (10x).
• Y por último,con el objetivo de gran aumento 40x ).

2ºEnfocar ,con el objetivo de 10x,uno de los cuadrados grandes situados en las cuatro esquinas del reticulo .

Contar el número de cuadros medianos contenidos en ese cuadro grande periférico :16.

Teniendo en cuenta que la longitud de de cada uno de los lados delreticuloes de 3 mm,calcular :

• La longitud de los lados de cada cuadro grande periférico : 1 mm.
• La longitud de los lados de cada uno delos cuadros medianos englobados en un cuadro grande periférico :  0,25

Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el reticulo y el cubre es de 0,1 mm,calcular el volumen de sangre diluida que hay en la cámara de recuento montada,a nivel de :  

• El retículo entero :  3 x 3  x 0,1=0,9 mm3
• Un cuadro grande periférico :1  x  1 x 0,1= =01mm3
• Un cuadrado mediano incluido en un cuadro grande periférico : 0,25 x 0,25 x 0,1  = 6,25 x 10 -3

3º Enfocar ,con el objetivo de 10x,el cuadro grande central .

Contar el número de cuadros medianos contenidos en ese cuadro grande central : 5 x 5= 25 cuadros.

Contar el número de cuadros pequeños englobados en uno de esos cuadros medianos : 16 medianos.

Teniendo en cuenta que la longitud de cada uno de los lados del retículo es de 3 mm,calcular :

• La longitud de los lados del cuadro grande central :1 mm
• La longitud de los lados de cada uno de los cuadros pequeños incluidos en el cuadro grande central : 1 : 5 = 0,2mm
• La longitud de los lados de cada uno de los cuadros pequeños contenidos en uno de eso cuadros medianos :  0,2 : 4 = =0,05 
• Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el reticulo y el cubre es de o,1 mm, calcular el volumen de la sangre diluida que hay en la cámara de recuento montada,a nivel de :
• El cuadrado grande central :   1 mm x 1mm  x o,1 = 0,1 mm3
• Un cuadro mediano englobado en el cuadro grande central :  0,2mm x 0,2 mm x 0,1 =0,004 mm3
• Un cuadro pequeño incluido en uno de esos cuadros medianos :
  0,05 x 0,05  x  0,1 = 2,5 x 10 -4 mm3

TINCIÓN PANÓPTICO RÁPIDO(PRÁCTICA XI)

MATERIAL:

• Frascos de Wertheim.
• Frasco lavador.
• Cubre.
• 2 portas.
• Microscopio.
• Bata .
• Guantes.
• Papel de filtro liso.

REACTIVOS :

• Agua destilada.
• Aceite de inmersión.
• Solución nº1:Solución alcohólica de triarilmetano.
• Solución n2º : Solución tamponada de xanteno.
• Solución nº3: Solución tamponada de tiazina.

MUESTRA:

Frotis sanguineo preparado reciente (15 segundos)y  sea ha dejado secar al aire.

TÉCNICA:

1ºDestapo los tres frascos de Wertheim con sus números correlativos 1 ,2 y 3 , a continuación introduzco el porta en el frasco uno sumergiendolo 5 veces en un espacio de tiempo de un segundo cada inmersión.

2º Paso al siguiente frasco 2 y hago la misma operación anterior lo sumergo 5 veces .

3º Con el frasco 3 lo mismo que en los otros frascos .

4º Lavo con agua destilada y lo dejo secar.

5º Estando seca la muestra, le pongo el cubre  y le añado una gota de aceite de inmersión.

OBSERVACIÓN Y RESULTADO :

Coloco el porta sobre el microscopio y lo observo con el objetivo 100x.

Se aprecia un mayor colorido en la muestra con respecto a las tinciones de Giemsa y Wright.

 

HOJA DE TRABAJO:
1º¿ En qué se diferencia este método de las otras tinciones clásicas ? En que es un método de inmersión.
2º¿cuántos segundos debe sumergirse el frotis en cada una de las inmersiones ?5  segundos  (un segundo en cada inmersión ).
3º¿Cuál cree que es la solución fijadora ? La 1 ,solución alcohólica de triarilmetano.

Panoptico rapido

TINCIÓN DE GIEMSA.(Práctica 9 )6 / 11/ 2014

Material :
2portas bien limpios.
Microscopio .
Cristalizador .

Puente de tinción.
3 pipetas Pasteur
2 tubos de ensayo.
Un cubre.
Bata.
Guantes .
Papel de filtro liso.

Reactivos :

Solución colorante de Giemsa  y tampón
  pH 7,2 de Panreac.
Metanol.
Aceite de inmersión.

Muestra:

Sangre venosa anticoagulada(EDTA)

Técnica:
1º Hago un frotis sanguineo y dejamos secar según la tecnica.
2º Pongo el frotis sobre el puente de tinción  y en posición horizontal.
3º Cubro el frotis con metanol durante tres minutos .Eccurro y lo dejo secar al aire,así se fija el frotis.
4º a continuación pongo el porta sobre el puente de tinción y le añado con ayuda de la pipeta el colorante de Giemsa y tampón de ph 7,2 de Panreac y lo dejo actuar 25 minutos .
5º Pasado el tiempo escurrimos y lavamos el cubre con agua del grifo.Seguidamente lavamos con tampón ph 7,2 hasta eliminar los retos de colorante.
6º Dejo escurrir y que se seque en posición vertical.
7º Una vez seca la tinción le pongo el cubre y le pongo una gota de aceite de inmersión.

Resultado :

Los hematies se tiñen de rosa y los neutrófilos con su núcleo color azul violeta.

Hoja de trabajo :

1º¿Cuáles son los anticuagulantes más adecuados para esta técnica ?
Sangre capilar fresca o venosa anticoagulada con EDTA:
2º ¿Con qué reactivo fijamos el frotis ?Metanol.
3º ¿Cuánto tiempo debe actuar el colorante en el frotis ? 25 minutos.

PREPARACIÓN DE LA GOTA GRUESA(PRACTICA 8)

Material :
Un tubo de  sangre venosa anticoagulada.
Una pipeta Pasteur.
2 portas
2 cubetas de tinción (una con Giemsa al 3 % y otra cubeta con agua limpia )

Reactivos:

• Metanol.
• Solución colorante Giemsa al 3 %.
• Un vaso de precipitados .
• Un puente de tinción.

Técnica :

1º Colocar una gota de sangre en el porta y con el otro porta realizar una extensión y la dejamos secar.

2º En el otro extremo al lado de la extension echo tres gotas de sangre en forma de un pequeño triangulo con el vertice de este  mirando hacia el frotis y seguidamente con la ayuda de un porta por un extremo hacemos sobre las tres gotas movimientos circulares,(unos 6 movimientos) sobre ellas para lograr la desfibrinación  de la sangre.

3º Coloco el porta sobre el puente de tinción y le añado al frotis  tres gotas de metanol  para fijarlo solamente a el,  la gota gruesa no  y lo dejo unos segundos.

4º La gota gruesa se deja secar unas 24 horas  en posición horizontal y protegemos la muestra de moscas ,polvo y de calor excesivo.

5º Pasado ese tiempo ,introducimos la muestra el la cubeta de giemsa ,durante 30 a 45 minutos y protegida en ese tiempo de la luz solar.

6º Sacamos el porta de esta solución de Giemsa y la pasamos a la cubeta de agua limpia unos segundos .

7º Extraigo el porta y lo dejo secar en posición vertical.

Fundamento :

Para el estudio de parásitos del género Plasmodium hay cuatro especies que se encuentran en su fase inicial en algunas de sus etapas  en la sangre periférica y para ello se hace una extensión fina y otra gruesa en el mismo porta .

Hay que prestar atención en los hematies infectados y los parásitos que pueden haber dentro de ellos.

El paludismo se basa en el aspecto de los parasitos que pueden ser :como motas rosas o rojas en el interior de los eritrocitos (Plasmodiun Vivax y ovale );en forma de anillo ,en forma de ameboideas;conglomerados de merozoitos y gametocitos libres en plasma.

Resultados :

El recuento de los parásitos se hace con cruces y en campos de 100.






Hoja de trabajo :
1º ¿Qué colorante se utiliza para teñir la preparación de gota gruesa ?
Giemsa al 3 %
2º ¿Cómo están los hematíes en la preparación de gota gruesa ?
Están alisados.
3º ¿Con qué sustancia se fija la preparación de gota gruesa ?
Metanol.

Resultados obtenido :La muestra se ve oscura y por lo tanto no se puede apreciar nada.
Valoración de los resultados :La extensión debe ser considerada como :
No válida.

TINCIÓN DE WRIGHT (PRACTICA X)

TINCIÓN DE WRIGHT.

• Materiales:
• Cristalizador
• Frasco lavador.
• Guantes.
• 2Tubos de ensayo.
• 3 Pipeta Pasteur.
• Bata.
• Gradilla
• Capilar.
• Puente de tinción.

Reactivos :

Solución de Wirght.

Solución tampón pH 7,2 

Aceite de inmersión.

Muestra :  

Sangre venosa anticoagulada.

Tëcnica :

1º Pongo una gota de sangre en el porta y con la ayuda del otro porta ,realizo un frotis sanguineo muy fino.Lo dejo secar.

2º Coloco el porta sobre el puente de tinción  vierto 1 ml de Wright .Dejo actuar 1 minuto y despues lavo con solución tampón ph7,2 ,lo dejo escurrir y lo pongo a secar en posición vertical.

3º Preparo  un tubo de ensayo le echo 5 ml de Wright y 5 de tampón pH 7,2  ,mezclo bien y cuando este seco el porta lo cubrimos con esta mezcla durante 3 a 5 minutos  y lavo con agua del grifo.

4º A continuación vuelvo a lavarlo con el tampón .Lo dejo escurrir y secar en posición vertical.

5º  Le pongo a la muestra una gota de aceite de inmersión y lo pongo en el microscopio.

Observación:

Observo con el aumento de 100x .

Resultado :

Las células son del mismo color que las de la tinción de Giemsa.

Hoja de trabajo :
1º¿Que tipo de colorante utilizamos en esta tinción ?
Wright.
2º ¿qué sustancia empleamos como fijador ?
La misma anterior por que la solución ya lleva metanol en su composición.
3º ¿Cuánto tiempo debe estar en contacto el frotis  con el colorante  diluido ?

Un minuto .

REALIZACIÓN DE UNA EXTENSIÓN SANGUÍNEA(PRACTICA 7)

RELIZACIÓN DE UNA EXTENSIÓN SANGUÍNEA 6/11/2014.

MATERIALES :

2 portas
Pipeta Pasteur
Guantes
Bata.
Gradilla.
Tubo sanguineo.

Un rotulador de vidrio.
MUESTRA:

Sangre venosa anticoagulada.

Técnica y fundamento :

1ºCojo un porta y le echo una gota de sangre a unos dos centimetros de extremo del porta y con el otro porta difusor lo pongo un poco más adelante de la gota y lo inclino unos 45 grados hasta alcanzar la gota .
2º  Dejo que la gota se extienda ,por capilaridad y arrastro el porta hacia adelante ,con un movimiento firme ,uniforme y rapido .Este movimiento debe acabar antes de llegar al otro extremo del porta con sangre.

3º Dejar secar la extensión ,agitandola al aire como un abanico,para que sus células no se distorsionen.
4º Rotulo el nombre del enfermo ,en el porta de la extensión.

Hoja de trabajo:
1º ¿Con qué sustancia se anticoagula la sangre venosa cuando se pretende hacer una extensión ?
 Con EDTA (heparina )
.
2º ¿Cuánto tiempo puede pasar ,como máximo, desde la extracción de la sangre hasta la realización del frotis ?
3horas
3º ¿Qué ángulo debe formar el porta extensor ?45grados.
El resultado obtenido :
La extensión está bien realizada.

La valoración del resultado :
La extensión de ser dada como.....válida.

TINCIÓN SUPRAVITAL CON AZUL DE METILENO(PRACTICA V)

TINCIÓN SUPRAVITAL CON AZUL DE METILENO 6 /11 / 2014

• MATERIAL.
• Gradilla
• Papel de filtro liso
• 2 portas 
• 1 cubre
• 2 tubos de hemólisis
• 3 Pipetas Pasteur.
• Papel parafilm
• Microscopio óptico.
• Bata 
• Guantes.

REACTIVOS:

• Azul de metileno.
• Oxalato potásico.
• Agua destilada.

MUESTRA:

Sangre venosa anticoagulada.

TÉCNICA Y FUNDAMENTO :

1º Me pongo la bata y los guantes y todos los utensilios necesarios que necesito para hacer la tinción.

2º Prepararo el colorante de la siguiente manera:

Azul de metilenoal O,5 g.

Oxalato potásico     1,6g.

Agua destilada        100 g.

Este preparado lo he hecho con anterioridad y lo tengo en un frasco ,ya etiquetado ,listo para su uso.

3º  En un tubo de ensayo echo un poco de sangre venosa anticoagulada y la pongo sobre la gradilla .

4º Cojo otro tubo de ensayo y  le echo dos gotas de la sangre y dos gotas de colorante ,homogeneizo .

5º Lo tapo el tubo con papel parafilm y lo dejo reposar 10 minutos a temperatura ambiente.

6º  Destapo y cojo con ayuda de la pipeta una o dos gotas de la mezcla y la coloco sobre  un porta y a continuación le pongo un cubre .

OBSERVACIÓN:

Observo con el microscopio la preparación con el objetivo de 40 x.

RESULTADO:

Se ven los hematíes todos unidos y de color anaranjado.

Hoja de Trabajo :

1º¿En qué se diferencia una tinción vital de una supravital ?La vital consiste en la introducción de un colorante en la circulación de un organismo vivo y la supravital ,que emplean el colorante sobre células o tejidos vivos aislados en el organismo.

2º ¿Cuáles son los colorantes vitales más utilizados ?
-Rojo neutro.
-Verde Jano .
-Azul de metileno.
3º ¿ Qué tipo de estructuras tiñe selectivamente el verde Jano ?
Mitocondrias y otros orgánulos celulares.
4º ¿Cuáles son las ventajas de un tinción supravital ?
Permiten la observación sobre células o tejidos vivos ,sin necesidad de meter el colorante en el organismo.

5º ¿Cuáles son los inconvenientes ?

No se pueden observar las muestras en su entorno vital y para su extracción se necesitan técnicas invasivas.


RESULTADO OBTENIDO :
 LOS HEMATIES ESTAN MUY JUNTOS UNOS DE OTROS COMO PILAS DE BOTÓN

Observación de sangre en fresco

PREPARACIÓN DE SANGRE EN FRESCO

PREPARACIÓN DE SANGRE EN FRESCO 6 /11 /2014.

MATERIAL:

Microscopio.

Porta .

Cubre.

Capilar

Lanceta

Gasa .

  Alcohol.
 MUESTRA :

Sangre capilarizada

TÉCNICA :

Desinfecto el dedo corazón con una gasa impregnada en alcohol  me pincho con la lanceta y desprecio la primera gota a continuación me sigo apretando en el dedo para coger la muestra con el capilar cuando lo tengo listo coloco el capilar sobre el porta y deposito una gota de sangre y le pongo el cubre .
Y después observo la muestra en el microscopio con el objetivo de 40 x.


RESULTADOS:

Los globulos rojos frescos  se ven de color anaranjado,se ven agrupados formando "pilas de monedas"

Se puede observar eritrocitos.

HOJA DE TRABAJO :
1º¿Qué tipo de colorante empleamos aqui ?
solo la sangre fresca

2º¿Qué ventajas posee esta técnica ?

Que se puede visualizar la estructura natural de las celulas o los cambios estructurales en procesos patologicos y se pueden apreciar quilomicrones.

3º¿Qué muestras podemos emplear ?

Sangre capilar o sangre venosa anticoagulada.

RESULTADOS OBTENIDOS:

Practica de clase disoluciones 6 /11/2014.

                                                PROBLEMA
Prepara suero salino o fisiológico (agua ,sal ) Na Cl + H 2 0 al 0,9 %.

Tenemos 100ml = 0,1 L

1º Suero salino 5 M

2º Suero salino    0,9 % -------- 100ml


Datos :
1º
M= _____g/PM_____
                    v

PM= 23+35,5= 58,5

5= g/ 58,5
     ________
         0,1 L

0,1 .5 =g/58,5

=,1 . 5 . 58,5 = g


g= 29.25

2º   29,25 ______100
      0,9     ______ x
         o,9.100
x=___________ = 3,8 ml
         29,25                      

DISOLUCIÖN:

• Vidrio de reloj.
• Oxalato potasico 29,25 g.
• Mortero 
• Varilla.
• Balanza de precisión .
• Espátula.
• Agua destilada .
• vaso de precipitados .
• Matraz aforado.
• Papel de filtro
• 5 gramos de azul de metileno.

• Preparación de la disolución :

Pongo sobre la mesa el papel de filtro y coloco encima todos los materiales citados anteriormente,cojo el vidrio de reloj y lo taro en la balanza a continuación con la espátula tomo sal y voy depositando sobre el vidrio de reloj hasta que marque en la balanza 29,5 g ,entonces cojo el mortero y pico la sal para hacerla mas fina para que se disuelva mejor  después la echo al vaso de precipitados y aboco también 5 gramos de reactivo de azul de metileno que he pesado aparte  añado un poco de agua destilada y remuevo hasta que se  disuelva bien a continuación paso el contenido en el matraz aforado que es de cien miligramos y le termino de añadirle  agua hasta completar la linea de enrase con la ayuda de una pipeta para no sobrepasarme ,la tapo con un tapón y la agito un poco para que se mezcle bien a continuación echo la preparación en un frasco con tapón de rosca ,etiqueto y guardo la mezcla para la próxima vez que me haga falta .

PRACTICA (2 ) DEL LIBRO- CRISTALIZACIÓN DE LA SALIVA.

CRITALIZACIÓN DE LA SALIVA  6/11/2014.


Material :


*Un microscopio.

*Dos portas.

*Un pañuelo de papel.
*Una pipeta Pasteur.


Muestra:

Saliva,que previamente me he enjuagado la boca antes para que este limpia la saliva.

Fundamento :

La saliva cuando la mujer está ovulando la presencia de estrógenos es elevada y cristaliza facilmente, cuando se la deja secar sobre un porta y se puede apreciar en el microscopio.

Técnica :

Cogemos con la ayuda de la pipeta una muestra de la saliva de la boca acontinuacion la colocamos sobre el porta que hemos limpiado previamente con el papel absorvente y la depositamos y la extendemos  con ayuda de otro porta .
Dejamos secar la muestra.
A continuación cogemos la muestra y la colocamos en el microscopio ,cerramos un poco eldiafragma para que no entre demasiada luz y se aprecie mejor la muestra.

Observación:

Observo con el objetivo de 40x.

Y veo cristales abundantes en forma de un helecho con muchas ramificaciones.

Resultado :

Dada la abundancia de cristales y su forma es clara ,no hay dudas de que estoy en un día fértil en plena ovulación.

HOJA DE TRABAJO :

1º ¿Qué hormonas hacen que cristalice la saliva ?

La concentración de estrógenos.

2º¿Qué aspecto tienen los cristales que se forman en la saliva ?

Tienen el aspecto de hoja de helecho.

3º¿Cómo es la cristalización de la saliva en un estado de fertilidad clara ?

Es abundante.

VALORACIÓN DE LOS RESULTADOS:

ME ENCUENTRO EN ESTE DÍA EN UN ESTADO DE FERTILIDAD CLARA

CÉLULAS DEL TEJIDO EPITELIAL DE LA BOCA

CÉLULAS DEL TEJIDO EPITELIAL DE LA BOCA  HUMANA   20/10/2014

 Material:

Microscopio
Pinza de madera
Porta
Agua destilada
Mechero
 Pipeta Pasteur
Papel de filtro
Un palillo
Bata
Guantes

Muestra:
Células epitaliales de la boca.

Técnica y desarrollo :

Nos ponemos la bata y los guantes y pongo el material sobre la mesa y después cojo el  palillo y fricciono por el lateral interior de la boca,recogiendo la muestra en el palillo después pasamos el palillo por el porta y añadimos una gota de agua y lo esparcimos por el porta ,cogemos la pinza y sujetamos un extremo del porta para secar la muestra con la ayuda del mechero para que se fije en él  las células y lo hacemos con cuidado por que el cristal es sensible al calor y se podría romper si lo colocamos directamente sobre el fuego sin moverlo rápido.A continuación ponemos la muestra en el microscopio con el objetivo de 40 x.

Observación ;

Observo un fondo de color blanco y formas irregulares negras con aspecto de cristales rotos aislados y son abundantes.

Resultado :
Los núcleos  de las células que se aprecian son negros y aislados.

Técnicas básicas de laboratorio: medida de volúmenes

cuaderno de practicas de laboratorio: La piel de la cebolla

cuaderno de practicas de laboratorio: La piel de la cebolla: PRACTICA DE LABORATORIO LA PIEL DE LA CEBOLLA   20 /10 /2014. Material: Microscopio. Pinzas. Un porta. Un cubreobjetos. Un vid...

Introducción al manejo del microscopio. Fecha de la practica 17/10/2014.

Para aprender como se utiliza el microscopio.

Material utilizado:

• Un microscopio
• Un portaobjetos
• Un bolígrafo
• Cinta adhesiva trasparente.
• Un papel cuadriculado.

Procedimiento.:

1.Descubrir el aumento de los oculares y de cada uno de los objetivos del microscopio.
Calcular el aumento obtenido con el uso combinado de los oculares y cada uno de los objetivos.
Reseñar los resultados obtenidos,en el cuadro siguiente :

 AUMENTO DE LOS   --------AUMENTO DE CADA-------AUMENTO COMBINADO---------------
     OCULARES                             OBJETIVO                              
--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------
                                                  4 X                                                     40

         10                                      10 X                                                  100

                                                    40 X                                                  400
                                                     100 X                                                10000
--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------
2.Recortar un trozo de papel cuadriculado,de manera que tenga la forma y el tamaño de un portaobjetos.

Dibujar,en la porción media del trozo de papel ,un signo más (+),con 2 trazos de 4 cuadrados cada uno.
Escribir,lo más pequeño posible :

• Una letra D,en el extremo derecho del signo más.
• Unas letras IZ,en el extremo izquierdo del signo más.
• Una letra SP,en el extremo superior del signo más.
• Unas letras IN ,en el extremo  inferior del signo más.

Fijar el trozo de papel al portaobjetos mediante una cinta adhesiva,y de forma que el signo más quede hacia afuera.

Situar el portaobjetos,con la tira de papel hacia arriba,en la platina del microscopio.

Enfocar en la zona central del signo más,con cada uno de los objetivos ,excepto el de inmersión.En primer lugar,se debe enfocar con el objetivo de menor aumento,y en el último lugar,se ha de enfocar con el objetivo de mayor aumento.

3.Enfocar de nuevo,con el objetivo de menor aumento,la zona central del signo más.

  Sin dejar de mirar a través de los oculares y utilizando los tornillos reguladores de la platina:

Desplazar el campo microscópico hacia la derecha,hasta visualizar unas letras. 

     ¿Qué letras son visualizadas ? :

Las letras I Z (las de la izquierda )

Seguidamente,desplazar el campo microscópico hacia la izquierda,hasta visualizar otra letra.

      ¿Qué letra es la visualizada?

La letra D (al extremo izquierdo )

• Volver a la zona central.
• Desplazar el campo microscópico hacia arriba,hasta visualizar unas letras.

      ¿Qué letras son las visualizadas ?

Las letras D S(se ve en la parte superior al reves o invertida ).

• Seguidamente,desplazar el campo microscopico hacia abajo,hasta visualizar otras letras .

 ¿Qué letras son las visualizadas ?

Las letras N I (la parte inferior invertida al revés ).

¿Qué consecuencia se extrae de los resultados obtenidos ?

 Se ven las letras al revés e invertidas.

4.Enfocar sucesivamente,con el objetivo de menor aumento,lasletras rotuladas alrededor del signo más.

Fijandose en las escalas longitudinal y tranveral de la platina,establecer la posición exacta de cada una de esas letras.

Anotar los resultados obtenidos en el siguiente cuadro :

LETRAS                     COORDENADA LONGITUDINAL        COORDENADA TRANSVERSAL

--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------

    D                                           13                                                                133

    

   IZ                                            12                                                                157

  

   SP                                           3                                                                  144

   IN                                            24                                                               144,5

------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------  

Quitar el porta objetos y mover la platina.

Volver a poner el portaobjetos en la platina.

Situando las escalas en las posiciones previamente establecidas,localizar directamente cada una de las letras,sin necesidad de barrer visualmente la tira de papel.